Dr. Julia K. Böhm

im EU-Forschungsprojekt CENTER-TBI (Collaborative European NeuroTrauma Effectiveness Research in Traumatic Brain Injury). Aufgaben: Projektmanagement, Koordination von Projektmitarbeitern, Durchführung und Planung des Projektes, Statistische Daten-Auswertung (SPSS), Verfassung von Publikationen und Projektberichten.

Doktorandin Thema: Der Nutzen zellulärer Mikropartikel bei der in vitro simulierten Trauma-assoziierten Gerinnungsstörung. Abschlussnote: magna cum laude

im EU-Projekt iTACTIC (implementing Treatment Algorithms for the Correction of Trauma-Induced Coagulopathy: study protocol for a multicentre, randomised controlled trial.). Aufgaben: Planung, Durchführung, Dokumentation und Monitoring der Studie.

Abteilung Wundheilungsforschung. Schwerpunkt der Forschung: Adulte primären Stammzellen als potentieller Trigger für die Wundheilung. weiterer Forschungsschwerpunkt: Auftragsforschung der Firma Draco, Entwicklung eines 3D Haut- und Wundmodell, Erlernte Techniken: Zellkultur Techniken (Differenzierung von Fettstammzellen (Osteogenese, Adipose)) Molekularbiologische Techniken (Telomerase Assay (Southern Blot)), Zellvitalität (Fluorometrische Bestimmung)

Forschungsthema: Geschlechtsspezifische Unterschiede bei der Amyothrophe Lateralsklerose (ALS). Erlernte Techniken: Zellkulturtechnik (Kultivierung und Stimulation von primären Motorneuronen, Präparation und Kultivierung von primären Astrozyten und Neuronen), Immunohistologische Techniken (Immunofluoreszenz, ABC-Methode), Genexpressionsanalyse (Isolierung von RNA/DNA aus Gewebe und Zellkultur, cDNA-Synthese, konventionelle PCR, real-time PCR, Bestimmung intrazelluläres Kalzium (Luciferase-Assay)

Thema der Masterarbeit: ADAM17 vermittelte Signaltransduktion bei der Aktivierung von glatten Muskelzellen mit Lipopolysaccharid. Erlernte Techniken: Proteinchemische Techniken: Durchflusszytometrie,ELISA und WesternBlot; Zellkulturtechniken: Produktion von lentiviralen Partikeln, Kultivierung von Primärzellen

Forschungspraktikum in der Abteilung für Pharmazeutische Produktentwicklung Erlernte Techniken: Protein-chemische Techniken (Expression von E.coli, Reinigung von Proteinen über IMAC, WesternBlot, ELISA, Immunoblotting), molekular-biochemische Techniken (DNA-Isolation, Restriktion, Agarose-Gelelektrophorese), Umgang mit CLC Combined Workbench und Clone Manager.

Entwicklung einer quantitativen real-time PCR (Molecular Beacons) zur Erfassung des H1N1-Virus. Klonierung von EBV-Genen.

Bachelorarbeit: Vergleichende Charakterisierung der MHV-68-Infektion gealterter BALB/c-Mäusen. Techniken: Proteinbiochemische Methoden, Immunologische Methoden (WesternBlot, immunhistolog. Färbeverfahren); Molekularbiologische Methoden (real-time PCR, PCR-Array) Zellkulturtechniken.

Erlernung von molekularbiologische (Isolierung von RNA/DNA aus Gewebe und Zellen, Klonierungstechniken, Plasmidpräparationen), proteinchemische (WesternBlot, Proteinisolation, Proteinbestimmung) , mikrobiologische (Virusanzucht, Virustitration, Kultivierung und Anzucht von Bakterien), immunhistologischen (ABC-Methode, Immunofluoreszenz) Techniken

Rote Biotechnologie: Pharmakologie, Proteinchemie und Signaltransduktion, Immunologie Gemischte Module: Molekulare Mikrobiologie und Biotechnologie, Biomaterialien und Glykobiotechnologie, Forschungspraktikum: Fraunhofer-Institut für Molekularbiologie und Angewandte Ökologie.

Naturwisschenschaften

Grundlagenstudium: Zellkulturtechnik, Downstream-Prozessing, Enzymtechnologie, Bioverfahrenstechnik, Molekularbiologie, Gentechnik

Durchführung von chemisch, physikalischen und mikrobiologischen Untersuchungen von Milch und Milchprodukten nach dem LMBG.