Ing. Sabrina Förstner
Fähigkeiten und Kenntnisse
Werdegang
Berufserfahrung von Sabrina Förstner
- Bis heute 5 Jahre und 5 Monate, seit März 2020
Forschungsassistentin
Universität von Alberta, Kanada
- Bis heute 8 Jahre und 4 Monate, seit Apr. 2017
Aktives Mitglied
btS - Biotechnologische Studenteninitiative e.V.
- 6 Monate, Sep. 2019 - Feb. 2020
Forschungsassistentin
Tübingen Universität, Medizinische Klinik II
Thema: Analyse der Funktion und Differenzierung von dendritischen Zellen in Patienten mit multiplem Myelom. Methoden: - Aufbereitung von Blut- und Knochenmarksproben -FACS-Färbung -MACSen und FACS-Sortierung von CD34+ Vorläuferzellen -Messung von 12-Farbenpanels mittels Spektral Durchflusszytometrie (CYTEK Aurora) -Softwares: FloJo, FCS Express Flo 7, Graph Pad Prism, Microsoft Excel
- 2 Monate, Dez. 2018 - Jan. 2019
Forschungsassistentin
Tübingen Universität, Institut für Zellbiologie
Thema: Bestimmung des Effekts von Mat2a knock down auf die Proliferation von Hepatoma Lebertumorzellen. Methoden: -Zellkulturtechnik mit Lebertumorzellen -Transiente Transfektion mit siRNA -mRNA-Isolation -Reverse Transkription -Gel Elektrophorese -Butanol-Ether Behandlung -RT-qPCR zur Quantifizierung von mRNA -MTT Assay Arbeitsgruppe Prof. Dr. rer. nat. Nordheim
- 3 Monate, Juni 2018 - Aug. 2018
Studentische Hilfskraft
Ulm Universität, Institut für Mikrobiologie und Biotechnologie
Thema: miR-124-5p reguliert die Phagozytose von humanen Makrophagen durch das Aktinzytoskelet über den ARP2/3 Komplex. Methoden: -PBMC-Isolation von Spenderblut -miRNA-Isolation und cDNA-Synthese -RT-qPCR für die Quantifizierung von miRNAs -Western Blot -Zellkulturtechnik mit sechs verschiedenen Zelllinien (HeLa, Jurkat, Hep3b, HEK, THP-1 und T98G Zellen) Arbeitsgruppe PD Dr. rer. nat. Christian Riedel
- 3 Monate, März 2018 - Mai 2018
Bachelorandin
Ulm Universität, Institut für Mikrobiologie und Biotechnologie
Thema: Etablierung und Optimierung einer qPCR-Methode zur relativen Quantifizierung der reifen hsa-miR-124-5p in GM-CSF- und M-CSF-differenzierten humanen Makrophagen. Methoden: -Isolation von humanen PBMCs -Differenzierung von humanen Monozyten zu GM- und M-Makrophagen -miRNA Isolation -Reverse Transkription von miRNA zu cDNA -PCR -Agarose Gel Elektrophorese -Quantitative PCR für die Quantifizierung von miRNAs Arbeitsgruppe: PD Dr. rer. nat. Christian Riedel
- 7 Monate, Aug. 2017 - Feb. 2018
Forschungsassistentin
Ulm Universität, Institut für Mikrobiologie und Biotechnologie
Thema: Validierung eines Hochdurchsatz-miRNA-Screenings in PMA-differenzierten THP-1 Makrophagen mittels Durchflusszytometrie. Methoden: -Zellkulturtechnik mit der THP-1 Zelllinie -PMA-Differenzierung von THP-1 Monozyten zu Markophagen -Transiente Transfektion von Makrophagen mit siRNA -Durchflusszytometrie (Gating Strategie für Makrophagen Population, Viabilität, Transfektion und Phagozytose) Arbeitsgruppe von PD. Dr. rer. nat. Christian Riedel
Ausbildung von Sabrina Förstner
- Bis heute 6 Jahre und 10 Monate, seit Okt. 2018
Molekulare Zellbiologie und Immunologie
Eberhard Karls Universität Tübingen
Molekulare Humangenetik, Zellbiologie, Molekulare Mausgenetik, Digitale Bildauswertung in der Zellbiologie, Nanopore-Sequenzierung, Proteomics, Molekulare Immunologie
- 4 Jahre, Sep. 2014 - Aug. 2018
Pharmazeutische Biotechnologie
Hochschule Biberach
Pharmazeutische Biotechnologie, Verfahrenstechnik, Chemie, Mikrobiologie, Zell- und Molekularbiologie, Gentechnik, Technische Mikrobiologie, Anlagen- und Reinraumtechnik, Biotechnologische Aufarbeitung, Zellkulturtechnik, Bioinformatik, Bioprozessentwicklung, Rechtsgrundlagen
- 2 Jahre und 11 Monate, Sep. 2010 - Juli 2013
Ernährungswissenschaften
Agnes von Hohenstaufen Schule, Schwäbisch Gmünd
Deutsch, Englisch, Mathematik, Biologie, Physik, Ernährungslehre mit Chemie, Wirtschaftslehre, Biotechnologie, Sport
Sprachen
Englisch
Fließend
Deutsch
Muttersprache
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