Danny Jeske

MBI Berlin: • Arbeiten in der primären Zellkultur, mit Schwerpunkt in Kultivierung und Vorbereitung von humanen Endothelzellen der Herzkranzgefäße (HCAEC- Zellen) zur Durchführung von Bestrahlungsexperimenten mit Lasertechnologie HU Berlin: • Kultivierung von eukaryotischen Zellen (z.B. Hek, Hela) • Planung und Durchführung eukaryotischer Zellexperimente • Proteinexpression und Aufreinigung (FPLC) von rekombinanten Proteinen • Planung, Durchführung und Auswertung enzymatischer Assays

• Kultivierung von eukaryotischen Zellen (z.B. Hek, Hela) • Planung und Durchführung eukaryotischer Zellexperimente • Kultivierung von prokaryotischen Zellen und Insektenzellen • Proteinexpression und Aufreinigung (FPLC) rekombinanter Proteine (prokaryotischen und eukaryotischen Ursprungs) • Planung, Durchführung und Auswertung enzymatischer Assays • molekularbiologische Klonierungsarbeiten • Entwicklung, Durchführung und Auswertung Liposomen-basierter Assays • Betreuung von Studenten und Praktikanten

• Planung und Durchführung von Capture-Experimenten zur Ermittlung spezifischer Interaktionspartner für pharmazeutische Wirkstoff-Kandidaten unter Nutzung der Capture Compound Mass Spectrometry (CCMS) • firmeninterne Weiterentwicklung und Optimierung der CCMS-Technologie • Vorbereitung, Ausführung und Optimierung von Experimenten zur Identifizierung weiterer potentieller Target-Kandidaten von bereits charakterisierten Wirkstoffen zur Erschließung neuer Anwendungsmöglichkeiten

• Etablierung von Infrastruktur und Methodologie zur Klonierung von DNA-Fragmenten • Expression und Reinigung rekombinanter Proteine aus Mikroorganismen-Zellkulturen (E.coli) • Etablierung und Durchführung quantitativer Bindungsassays • Planung, Vorbereitung und Ausführung der entsprechenden Experimente • Planung, Leitung und Durchführung von Workshops zur Vorstellung der CCMS-Technologie

Thema der Masterarbeit: Entwicklung einer Methode zur Identifizierung der Verbrückungsstelle von trifunktionalen Capture Compounds (synthetische Kleinmoleküle) mit Zielproteinen

• Entwicklung von caproKits für die funktionelle Proteomanalyse • Optimierung der CCMS-Parameter für konkrete Kollaborationsprojekte mit Pharmafirmen und Forschungsgruppen • Generierung und Aufarbeitung von CCMS-Proben für die massenspektrometrische Analyse • Betreuung und Anleitung von Praktikanten

Masterarbeit: bei der Caprotec Bioanalytics GmbH “Methodische Weiterentwicklung zur Identifizierung der Position der photochemisch induzierten Verbrückung eines Capture Compounds zu einem Zielprotein“

Schwerpunkt: Genetik/Molekularbiologie, Mikrobiologie, Pflanzenphysiologie; Diplomarbeit: Herstellung von Cyanobakterienmutanten und Analyse der Funktion in der Tetrapyrrolbiosynthese