
Nicole Voltz
Fähigkeiten und Kenntnisse
Werdegang
Berufserfahrung von Nicole Voltz
- Bis heute 2 Jahre und 10 Monate, seit Sep. 2022
Biologisch-Technische-Assistentin in der Unimedizin Mainz, Immunologie, AG Bopp
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
- 1 Jahr und 8 Monate, Jan. 2021 - Aug. 2022
Biologisch-Technische-Assistentin in der Zahnklinik, AG Prof. Deschner
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Projekt: Parodontologie und Zahnerhaltung; Aufgabenfeld: PCR, RNA-Isolierung, Umschreibung in cDNA, RT-PCR, Zellkultur, Stimulierung und Probengewinnung; ELISA, Western Blot, Live cell movie analyzer für Wundheilung
- 7 Jahre und 9 Monate, Apr. 2013 - Dez. 2020
Studienassistentin der Klinischen Forschung Pneumologie
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Betreuung von Patienten mit schwerem Asthma oder COPD selbstständige Organisation und Durchführung von klinischen Prüfungen im Bereich Pneumologie Regulatorische Grundlagen (ICH GCP, AMG, GCP-V, Deklaration von Helsinki,IATA-Gefahrgutschulung) Datenmanagement und CRF Qualitätssicherung und Kontrolle (SOPs, Audits und Inspektionen) Pharmakovigilanz- Handling von Studiendokumenten (Prüfplan, essential documents, ICF)
- 9 Monate, Juli 2012 - März 2013
Biologisch-Technische-Assistentin in der I. Med. Klinik AG Schuppan
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
PCR, RNA-ISOLIERUNG, Umschreibung in cDNA, RT-PCR, TG2-ELISA histologische und immunhistologische Nachweisverfahren (insbesondere Cryoschnitte von diversen Gewebe- und Organproben und deren Immunfluoreszensfärbungen), HE-Färbung, fluoreszensmikroskopisches Arbeiten Zellkultur, Zölliakiemausmodell,Tierversuche an Mäusen, Isolierung von Glutenpeptiden aus Weizenmehl, Lyophylisierung von Glutenpeptiden.
- 4 Jahre und 1 Monat, Juni 2008 - Juni 2012
Biologisch-Technischen-Assistentin in der Hautklinik AG Grabbe
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Analyse von transgenen Mäusen mittels Facs, Tierversuche an der Maus, Isolierung und Kultivierung von DC´s und T-Zellen aus der Maus, Proliferationsassay, Zellkultur,PCR, Isolierung, Umschreibung in cDNA, RT-PCR, histologische und immunhistologische Nachweisverfahren (insbesondere Cryoschnitte von diversen Gewebe- und Organproben und deren Immunfluoreszensfärbungen), fluoreszensmikroskopisches Arbeiten, LifeCellImagine (DC-T-Zell-Interaktion) und deren Auswertung
- 3 Jahre und 3 Monate, März 2005 - Mai 2008
Biologisch-Technische-Assistentin in der I. Med. Klinik AG Waisman
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Analyse von transgenen Mäusen mittels PCR, Westernblotting, histologische und immunhistologische Nachweisverfahren (insbesondere Cryoschnitte von diversen Gewebe- und Organproben und deren Immunfluoreszensfärbungen), fluoreszensmikroskopisches Arbeiten.
- 1 Jahr und 11 Monate, Mai 2003 - März 2005
Biologisch-Technische-Assistentin in der I. Med. Klinik AG Schuchmann
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Analyse von transgenen Mäusen mittels PCR, Westernblotting, Zellkultur , Isolierung von Kupferzellen und Hepathozyten aus der Mausleber und deren Kultivierung und Stimulierung ELISA, RNA-isolierung, RT-PCR- Analysen, Proliferationstest
- 3 Jahre und 1 Monat, Mai 2000 - Mai 2003
Biologisch-Technische-Assistentin in der I. Med. Klinik AG Blessing
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Klonierung, Konstruktion und Transfer eukaryontischer Expressionsvektoren, Kultur und Manipulation eukaryontischer Zellen einschließlich embryonaler Stammzellen der Maus, Analyse von transgenen Mäusen mittels PCR RT-PCR-Analysen, Westernblotting sowie histologische und immunhistologische Nachweisverfahren (insbesondere Cryoschnitte von diversen Gewebe- und Organproben und deren Immunfluoreszensfärbungen), fluoreszensmikroskopisches Arbeiten.
- 5 Jahre und 6 Monate, Nov. 1994 - Apr. 2000
Biologisch-Technische-Assistentin in der I. Med. Klinik AG Rose-John
Universitätsmedizin der Johannes Gutenberg-Universität Mainz
Umklonierung von cDNA Northern- und Southernblot-Analyse, PCR, Restriktionsverdau, Ligation, Transformation SDS-Page, Western-Blot, ELISA, Immunpräzipitation, Chromatographie, Gelfiltration, Expression von rekombinanten Proteinen in E.coli, S.cerevisia und P.pastoris, Zellkultur, transiente Transfektion, Proliferationstests, metabolische Markierung, Bestellwesen und Aufrechterhaltung der Zellkultur.
Sprachen
Deutsch
Muttersprache
Englisch
Gut
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